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发布日期:2023/8/17 16:49:00
CD4+T细胞响应感染会分化成多种亚群包括TH1(type 1 helper cells)、TH2、TH17、TREG以及TFH(follicular helper cells)[1]。病原体清除后,一部分细胞会持续存在于次级淋巴器官 (secondary lymphoid organs, SLOs) 或组织中成为长寿的组织驻留型记忆T细胞(tissue-resident memory T cells,TRM)[2],TRM的表型、功能和迁移指令均具有异质性[3-5]。长寿的CD4+TRM是免疫记忆的重要组成部分,但它们的发育来源和转录调控尚不清楚。
研究了急性 LCMV 感染后小肠 (small intestine,SI) 中CD4+T细胞的分化调控。作者发现位于固有层的CD4+TRM细胞在表型、转录和表观遗传学上与TH1细胞相似,并随着时间的推移获得了成熟的TRM程序。CD4+TRM同时表达Bcl6和Blimp1,它们与Id2一起组成建立TRM所必需的转录因子。这些发现强调CD4+TRM具有表达效应基因和记忆基因的混合转录程序,并表明在病毒感染中,循环TH1细胞是SI CD4+TRM的发育前体细胞。
 
 
为探究病毒感染后CD4+TRM的发育来源尤其是次级淋巴器官SLOs中的TRM与效应CD4+TH细胞亚群的相关性,作者用急性LCMV感染模型研究了CD4+细胞的反应过程。将能够识别LCMV的特异性SMARTA CD4+T细胞(SMARTA T cell receptor transgenic CD4+T cells)过继回输到受体小鼠体内,随后感染LCMV-Arm。通过流式分析脾脏(spleen,SPL)、间质淋巴结(mesenteric lymph nodes,mLNs),小肠上皮内淋巴细胞(intra-epithelial lymphocytes,IEL)、小肠固有层淋巴细胞(LP lymphocytes,LPL)、肾脏(kidneys,KID)、肝脏(liver,LIV)以及肺脏组织中CD4+T细胞变化情况。发现在感染第21天和40天,SPL和mLN中SMARTA CD4+T细胞主要分化为TH1(SLAM+)和TFH(CXCR5+)细胞。在感染第7、21、40天,所有组织和SPL以及mLN中SMARTA CD4+T细胞主要为SLAM+CXCR5-TH1细胞,说明TRM与TH1细胞亚群存在直接相关性。CD8+TRM会表达CD69和CD103,作者进一步分析发现IEL和LPL中大部分CD4+TRM表达CD69而不表达CD103,这区别于CD8+TRM。终末分化的CD4+T会表达Ly6C,而多潜能性细胞为Ly6C-。在感染第7天,SPL、mLN以及小肠中有50%的CD4+T细胞为Ly6C+。在感染第21天,小肠中大部分CD4+TRM均为Ly6C-,而循环中的CD4+T细胞仍然为Ly6C+。说明组织中的CD4+T细胞可以通过CD69+和Ly6C-与循环细胞区分。与SMARTAT细胞一致,作者用LCMV-Arm-specific NIP小鼠来源的CD4+T细胞和GP-specific SAMRTA细胞进一步证明了小肠中CD4+TRM的表型与TH1细胞表型相近并表达CD69。
 
 
图1. CD4+TRM在病毒感染后获得TH1细胞特征
 
作者通过RNA-seq分析发现,感染第7天 IEL和LPL中CD4+T细胞与TH1细胞聚类相近。基因富集分析发现感染第21天SI中CD4+T细胞明显在TH1细胞基因表达特征富集,并且与TH1和脾脏TFH相比CD4+TRM在CD8+TRM及CD4+NLT细胞基因表达特征富集,说明CD4+TRM在记忆早期阶段已经上调了组织驻留相关基因的表达。与naïve CD4+T细胞相比,IEL和LPL中效应记忆细胞明显表达小肠归巢趋化因子受体如Ccr9,同时表达与TRM程序启动相关的基因如上调CD69,下调Klf2和S1pr1。感染第21天IEL和LPL中的CD4+ TRM表达同时表达effector/TH1和memory/TFH程序相关基因。D21 SI和TH1群体同时表达Bcl6和Prdm1,但是这些TF是已知的相互拮抗转录因子。ATAC-seq数据同样显示感染第7天IEL和TH1相似而显著区别于naïve和TFH细胞。这些结果说明LCMV-Arm感染后CD4+TRM与效应TH1细胞在转录组、染色质组相似,说明这两群细胞具有相关性。
 

图2. CD4+TRM在病毒感染后在转录和表观遗传修饰与TH1相似

 

作者进一步探究了循环CD4+T细胞和SI CD4+TRM细胞在感染后的分化和功能。CCR9和CD49a能够介导细胞肠道归巢,分析发现在IEL和LPL中CCR9+CD49d+CD4+T比例增加,并且SPL中高于80%的CD4+T细胞、mLN中高于90%的CD4+T细胞为SLAM+TH1细胞,说明循环的TH1细胞与SI CD4+TRM之间存在关联性。作者进一步评估了SI CD4+TRM与脾脏效应T细胞亚群的功能差异,在体外用SMARTA CD4+T细胞特异性抗原肽GP61-80刺激后,发现感染早期效应阶段的CD4+T细胞无论在SI还是脾脏中均高表达IFN-γ和TNF-α,而在记忆阶段与脾脏T细胞相比,SI中仅有少量CD4+T细胞表达IFN-γ和TNF-α。与SPL和mLN中CD4+T细胞相比,SI CD4+T细胞在效应和记忆阶段均表达高水平granzyme A 和 B。这些结果进一步强调了SI CD4+TRM与TH1效应细胞之间的相似性。

 

RNA-seq结果显示感染第7天的CD4+TRM细胞获得了记忆CD4+TRM 13-15%的基因表达特征,而CD8+TRM在感染第七天已经获得成熟TRM约57%的基因表达特征,说明CD4+TRM在感染后的成熟动力学过程与CD8+TRM不同。这可能与细胞的组织定位有关,CD8+TRM在感染D21天主要分布在IEL中,而CD4+TRM主要在LP中。因此CD4+TRM的成熟比CD8+TRM需要更长的时间。为了探索效应和记忆 SI CD4+ T细胞亚群之间转录程序的差异,并评估这些群体中细胞的异质性,作者进行了bulk RNA-seq和scRNA-seq。结果显示感染D21天 SPL和LPL样本都具有独立的基因特征,感染D7天的细胞仅表达少量SPL或SI特征基因。TH1记忆细胞特征基因主要在感染D7天和感染D21天SI细胞中表达,而记忆TFH特征基因主要在感染D21天SPL中表达。RNA velocity分析显示感染早期的脾脏CD4+T细胞向IEL和LPL群体逐步发展成成熟TRM群体的过程。综上感染早期SI中T细胞与脾脏T细胞相似,随后逐步分化成组织定居型CD4+T细胞。

 

图3. 效应CD4+T细胞逐步获得成熟SI TRM程序

 

为确定CD4+TRM是否存在异质性,作者通过scRNA-seq分析感染第21天 SPL和LP中CD4+T细胞,结果显示LPL簇在记忆性TH1,NLT以及CD8+TRM特征基因均有富集,而SPL仅在记忆TFH特征基因存在富集。分析调控效应T细胞和记忆T细胞转录因子发现,SPL群体存在异质性,既表达效应程序基因也表达记忆程序基因,并且测序结果推测Blimp1、Id2以及Bcl6能够调节CD4+TRM程序,使得CD4+TRM能够长期维持效应和记忆功能。随后作者通过Blimp1-YFP SMARTA CD4+T、Blimp1-KO SMARTA CD4+T、Id2-YFP SAMRTA CD4+T过继回输等实验发现Blimp1和Id2缺失后影响了早期CD4+TRM的分化,减少了SI CD4+TRM的数量。基于TH1和CD4+TRM在表型、转录组、功能方面的相似性,作者推测效应TH1群体中包含CD4+TRM祖细胞,进一步通过过继回输TH1细胞和TFH细胞,证明了TH1细胞会分化成SI TRM,而TFH主要在SPL和mLN中。

 

图4. SI CD4+TRM具有异质性,同时表达效应和记忆进程相关基因

 

Bcl6在记忆阶段SI CD4+TRM中表达,作者进一步探究了Bcl6是否调控CD4+TRM,用Bcl6-KO SMARTA T细胞过继回输实验发现,感染D7天脾脏和淋巴结中CD4+T SMARTA细胞显著减少,并且在记忆阶段细胞减少更加明显。Bcl6的缺失没有影响感染早期CD4+T细胞在SI中的累积,但是在感染第14天和第21天,Bcl6-KO细胞较WT细胞的比例和数量显著减少。通过RNA-seq分析感染早期WT和Bcl6-KO SMARTA CD4+T细胞,发现脾脏中Bcl6-KO细胞与TH1表型相似,SI中感染早期的Bcl6-KO细胞与感染21天WT CD4+T细胞相似。说明Bcl6的缺失促进了效应T细胞向成熟TRM细胞分化的进程。

文章结论与讨论,启发与展望
综上所述,作者探究了病毒感染后CD4+ TRM的分化和转录编程。在急性LCMV病毒感染后,SI中的感染早期 CD4+ TRM祖细胞群具有异质性,并且在表型、转录和表观遗传学上与脾脏TH1细胞群相似。在免疫记忆阶段,CD4+TRM同时表达TH1/effector和TFH/memory相关基因,包括在同一细胞中共表达拮抗因子 Blimp1和Bcl6。该研究确定了Blimp1和Id2在支持早期CD4+TRM发展中的作用,而 Bcl6可以介导组织中具有TH1特征的CD4+TRM的成熟和/或维持。需要进一步的工作来阐明CD4+ TRM如何在组织中维持,特别是Blimp1、Bcl6和Id2如何相互作用调节效应和记忆阶段的TRM基因表达程序。
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